基于石墨烯泡沫的酶生物传感器的构建研究文献综述
2020-06-08 21:16:16
文 献 综 述
1.概述
纳米技术是指在纳米尺度范围内,操纵原子、分子或原子团、分子团,使它们重新排列组合, 创造具有特定功能的新物质,或对某物质进行研究,掌握其原子和分子的运动规律和特性的崭新高技术学科,它的发展开辟了人类认识世界的新层次[1]。纳米科技和生命科学是21世纪最前沿的两大学科,纳米技术的介入为生命科学的研究提供了无穷的想象空间。人体内所发生的生命活动或生物反应都需要酶的参与,以提高效率[2]。而体内的酶大多不是自由状态存在,它们或是溶解于细胞质中,或是与各种膜结构结合在一起,或是位于细胞内其他结构的特定位置上,发挥其独特的生物催化性能。因此,以纳米材料为载体组装酶,体外模拟生命活动,研究酶生物催化行为,构建以酶为基础的纳米生物反应器和生物传感器已引起人们越来越大的兴趣[3-5]。
2.纳米材料及其发展
纳米材料是指三维空间尺寸至少有一维处于纳米级(通常为1-100 nm)的材料。由于纳米材料处在微观世界和宏观物体的临界区,属于典型的介观系统。因此它显示出许多不同于常规材料的特殊性能,如纳米材料具有的表面效应、宏观量子隧道效应、量子尺寸效应、小尺寸效应和介电限域效应[6,7]。
石墨烯是一个原子厚度的二维碳纳米材料,由于其高的比表面积,显著的导热性和优良的光电性能,受到了越来越多的研究者的关注,这些独特的性质是的石墨烯在电子器件,传感器和能量储存等领域得到了广泛的运用[8]。
石墨烯的巨大表面积取决于它的固体表面而大部分的多孔碳材料表面积是有大量的孔隙所贡献。但是,石墨烯由于范德华力的作用往往会不可逆的团聚甚至形成石墨,这就导致了石墨烯的表面积急剧下降。 许多研究人员试图设计出在石墨烯片层之间引入间隔来阻止石墨烯的团聚的材料这些材料有炭黑[9]、碳纳米管[10-14]、碳纳米纤维[15]、金属氧化物[16,17]、金属氢氧化物[18,19]等。多孔石墨烯材料由于其独特的多孔结构和石墨烯本省的优良性质在运输或储存电子、离子、气体和液体上有着极大的优势[20,21]。
随着科学技术的不断发展,纯石墨烯片的性能已经不能满足某些应用的特殊要求。相比原来的石墨烯片,多孔石墨烯材料表现出优异的性能为应用在电化学器件(超级电容器、锂离子电池、燃料电池,传感器,气体分离/储存和吸油。众所周知,多孔石墨烯材料可以分类根据孔径的微孔(孔径小于2 nm的中孔(2 nm),lt;lt;孔径小于50 nm),和/或大孔(孔径大于50 nm)[22]通常,石墨烯筛有特定表面积(SSA)-孔隙尺寸范围从几埃到纳米尺度,褶皱的石墨烯具有中孔或大孔结构,和石墨烯泡沫具有大孔结构。
因此发展多孔石墨烯的挑战依然存在,如:(i)精确控制孔的形状、大小和功能,以满足应用的要求(ii)保持结构的稳定性和高导电性,(iii)选择大规模、低成本的合成方法。
3.制备石墨烯泡沫的方法
石墨烯的制备方法主要有模板法、溶胶-凝胶法、水热法、以及核沸腾法。
3.1模板法
模板法合成石墨烯泡沫依赖于各种无机或有机纳米材料作为模板,通过控制纳米模板材料的性质可以制备指定大小和形态的石墨烯泡沫。[23]
模板法合成纳米材料与直接合成相比具有诸多优点,主要表现在:①以模板为载体精确控制纳米材料的尺寸和形状、结构和性质;②实现纳米材料合成与组装一体化,同时可以解决纳米材料的分散稳定性问题;③合成过程相对简单,很多方法适合批量生产。
模板法根据其模板特性的不同分为软模板法和硬模板法两种。两种方法都能提供一个有限大小的反应空间不同的是软模板法提供的是处于动态平衡的空腔,物质可以透过腔壁扩散进出;而硬模板法提供的是静态的孔道,物质只能从空隙开口处进入孔道内部。
3.1.1软模板法制备纳米材料
软模板一般都是由表面活性剂分子聚集而成。主要包括两亲分子形成的各种有序聚合物,如液晶、囊泡、胶团、微乳液、自组装膜以及生物分子和高分子的自组织结构等。这类模板是通过分子间或分子内的弱相互作用形成一定空间结构特征的簇集体。这种簇集体具有明显的结构界面,正是通过这种特有的结构界面使无机物的分布呈现特定的趋向,从而获得特异结构的纳米材料。软模板在制备纳米材料时的主要特点有:①由于软模板大多是两亲分子形成的有序聚集体,它们最大的特点是在模拟生物矿化方面有绝对的优势;②软模板的形态具有多样性;③软模板一般都很容易构筑,不需要复杂的设备。但是软模板结构的稳定性较差,因此通常模板效率不够高[24]。
3.1.2硬模板法制备纳米材料
硬模板是指以共价键维系特异形状的模板。如具有不同空间结构的高分子聚合物、阳极氧化铝膜、多孔硅、金属模板天然高分子材料、分子筛、胶态晶体、碳纳米管和限域沉积位的量子阱等。与软模板相比,硬模板具有较高的稳定性和良好的窄间限域作用,能严格地控制纳米材料的大小和形貌。但硬模板结构比较单一,因此用硬模板制备的纳米材料的形貌通常变化也较少[25]。
3.2溶胶-凝胶法
溶胶-凝胶法就是利用高化学活性组分的化合物作前驱体,在液相下将这些原料均匀混合,并进行水解、缩合化学反应,在溶液中形成稳定的透明溶胶体系,溶胶经过陈化胶粒间缓慢聚合,形成三维空间网络结构的凝胶。在氧化石墨烯水溶胶中加入掺杂物质形成混合液,得到掺杂的还原氧化石墨烯水溶胶混合液。氧化石墨烯水溶胶混合液静置数小时,用去离子水洗涤水凝胶混合液数次后,再经过冷冻干燥或超临界干燥,得到掺杂的还原氧化石墨烯泡沫。
3.3水热法
水热反应过程是指在一定的温度和压力下,在水、水溶液或蒸汽等中所进行的关化学反应。在水热条件下,水可以作为一种化学组分起作用并参加反应,既是溶剂又是矿化剂同时还可作为压力传递介质;将掺杂物质与氧化石墨烯在水热条件下充分混合,得到比表面积大,掺杂量高的石墨烯泡沫。
3.4核沸腾法
核沸腾是指发生在固体-液体界面上的一种传热形式。当固体与液体的温差ΔT达到一定值时,在固体表面上形成气泡,气泡增大到一定尺度就跃离固体表面,增加了液体的扰动,这时传热量大大增加,ΔT突然减小,这样就开始形成了界面上的核沸腾现象.石墨烯在加热表面上的沸腾沉积形成石墨烯泡沫。
4.微纳米限域空间中生物酶的催化性能
生命体中生物酶分子的尺寸在纳米级,它们通常在微纳米限域的空间或界面发挥其重要的生物催化功能。近年来,为充分发挥生物酶分子特有的催化性能,保持其生物活性,研究者们利用各种化学、材料及生物手段,体外构建人工限域生物传感器及生物反应器,模拟研究生命体内生物酶的催化活性及催化机制,并用于底物的代谢和微量物质的检测[23-31]。与宏观体系相比,在纳米限域空腔中,同一时间内只能有数量有限的分子处于或通过该纳米空腔,纳米空腔中的分子与分子间相互作用以及分子与纳米材料间的作用几率增大,分子识别和反应动力学机制发生剧变,单分子行为变得更加明显。因此,利用限域纳米空腔可以研究生物分子的特殊性质,甚至单分子行为。认识纳米空腔内的单分子输运规律,将有可能在分子水平上探索生物分子识别与反应动力学机制,为认识复杂的生命活动过程提供依据。
图1-6 电化学纳米流控装置操作原理:通过固载的酪氨酸酶催化,将非活性的苯酚转化为电化学活性的醌,醌进行氧化还原循环,从而产生很强的电化学电流信号
Rassaei等[32]构建了一个纳流控装置,并将酪氨酸酶固载在其只有6飞升的内部空间中。该装置同时结合了酶识别元件和电化学信号检测系统。在该限域空间里,通过电化学方法能够实时灵敏地检测微量的酶催化反应产物醌的存在,氧化还原反应循环过程能够有效地进行(见图1-6)。该研究体系非常适合于超小体积系统如单个生物细胞或细胞器含量的研究。Chang等[33]合成了中空二氧化硅纳米球(HSN),该纳米球密度低,腔内空间较大,外壳多孔具有渗透性,适宜腔内组装酶,模拟细胞内生物催化反应。作者们利用反相微乳模版法在HSN腔内包埋的辣根过氧化物酶(HRP@HSN)保持很高的催化活性。与固载在二氧化硅纳米球表面的HRP相比,HRP@HSN 的催化活性更好,可以很好地将吲哚乙酸催化氧化为自由基,从而杀死癌细胞。
Liu等[34]将脂肪酶包埋在FDU-12纳米笼中(见图1-7),通过硅烷甲基化对FDU-12进行两亲性修饰,可以很好分散在Pickering乳液中。结果表明,用FDU-12纳米笼包埋脂肪酶显示很强的酶催化活性,并且可有效防止酶流失。Ikemoto等[35]以孔径为7.6 nm的SBA-15分子筛为载体,将HRP酶通过静电吸附的方式固定在孔道中,结果表明,室温情况下,受限酶对H2O2氧化苯酚反应的催化速率明显优于游离酶,对失活剂尿素的抗失活性能也比游离酶强。
Qian等[36]开发了一种新型大孔二氧化硅泡沫(MSF,孔径约100 nm)的纳米反应器用于蛋白质水解研究,对293种蛋白质进行快速鉴别。通过静电吸附的方式将蛋白水解酶固定在纳米反应器中,由于MSF对溶液中蛋白质和酶的增浓效应,从而加速酶对蛋白质的水解,因而通过质朴分析法快速实现了多种蛋白质的鉴别。此外,他们用不同的其他物质对MSF进行修饰改性,并用于蛋白质的水解研究中去[37-39]。同时他们从这些研究中归纳出改性的MSF具有以下三大功能:(1)MSF中大孔孔道用作酶催化反应的纳米反应器;(2)无需增加溶液中蛋白质或酶的初始浓度,也无需通过预固定,即可在孔道中实现蛋白质和酶的快速富集,从而加速蛋白质的水解消化;(3)由于MSF表面化学改性基团与所检测蛋白质的特异性基团之间存在化学亲和力,纳米反应器可以原位分离酶促反应的特异性产品,并将非特异性多肽排到溶液中。
图1-7 FDU-12纳米笼封装酶过程示意图
利用在纳米限域空腔中固载酶可以构建生物传感器,如以多孔二氧化硅和氧化铝作为载体,在其孔道中固定不同种类的酶,制备酶传感器。Dai等[40]将葡萄糖氧化酶(GOD)固定在介孔二氧化硅孔道内制备成葡萄糖电化学传感器。研究表明,GOD不仅表现出很好的直接电化学性能,还很好地保持其生物活性,当以羧基二茂铁为电子媒介体时,该传感器对葡萄糖的检测线性范围为0.32-15.12 mM L-1。为提高介孔二氧化硅泡沫的导电性,增强电子传递能力,Wu等[41]成功合成了介孔碳-二氧化硅泡沫,并以其作为载体固定GOD在其通道内,制备了葡萄糖传感器。Xia等[42,43]等利用溶胶-凝胶法一步将HRP或GOD酶包裹在三维二氧化硅孔道中,制备电化学酶传感器。具体讲,他们采用电化学方法将酶包覆在多孔二氧化硅中,并同时将其固定在电极上,在电解过程中产生的-OH使二氧化硅前驱体水解生成二氧化硅,而产生的H2则使水解生成的二氧化硅产生孔道(如图1-8)。Piao等[44]在介孔二氧化硅孔道中固定GOD和胰蛋白酶(TR),并在孔道中将酶于抗体以共价键合的方式与IgG抗体(anti-IgG)相结合,标记在抗小鸡IgG(cIgG)和抗人IgG(hIgG)上,制备了检测IgG的免疫传感器。
图1-8 电沉积形成多孔二氧化硅实验流程示意图
参考文献:
[1] K. S. Novoselov, A. K. Geim, S. V. Morozov, D. Jiang, Y. Zhang, S. V. Dubonos, I. V. Grigorieva and A. A. Firsov, Science, 2004, 306, 666#8211;669.
[2] A. K. Geim and K. S. Novoselov, Nat. Mater., 2007, 6, 183#8211; 191.
[3]Y. Zhu, S. Murali, W. Cai, X. Li, J. W. Suk, J. R. Potts and R.S. Ruo#64256;, Adv. Mater.,2010,22, 3906#8211;3924.
[4]X. Huang, Z. Yin, S. Wu, X. Qi, Q. He, Q. Zhang, Q. Yan, F.Boey and H. Zhang, Small, 2011, 7, 1876#8211;1902.
[5]J. Liu, Y. Xue, M. Zhang and L. Dai, MRS Bull., 2012, 37, 1265#8211;1272.
[6] Penn S G, He L, Natan M J. Nanoparticles for bioanalysis [J]. Curr Opin Chem Biol,
2005, 5: 8-16.
[7] Ball P, Garwin L. Science at atomic scale [J]. Nature, 1992, 355: 761-766.
[8]C. Lee, X. D. Wei, J. W. Kysar, J. Hone, Science 2008, 321, 385.
[9]J. Yan, T. Wei, B. Shao, F. Ma, Z. Fan, M. Zhang, C. Zheng,Y.Shang, W. Qian and F. Wei, Carbon, 2010, 48, 1731#8211;1737.
[10]D. Yu and L. Dai, J. Phys. Chem. Lett., 2009, 1, 467#8211;470.
[11]Z. Fan, J. Yan, L. Zhi, Q. Zhang, T. Wei, J. Feng, M. Zhang, W.Qian and F. Wei, Adv. Mater., 2010, 22, 3723#8211;3728.
[12]M.-Q. Zhao, X.-F. Liu, Q. Zhang, G.-L. Tian, J.-Q. Huang, W.Zhu and F. Wei, ACS Nano, 2012, 6, 10759#8211;10769.
[13] J. J. Shao, W. Lv, Q. Guo, C. Zhang, Q. Xu, Q. H. Yang and F. Kang, Chem. Commun., 2012, 48, 3706#8211;3708.
[14] M.-Q. Zhao, Q. Zhang, J.-Q. Huang, G.-L. Tian, T.-C. Chen, W.-Z. Qian and F. Wei, Carbon, 2013, 54, 403#8211;411.
[15] Z.-J. Fan, J. Yan, T. Wei, G.-Q. Ning, L.-J. Zhi, J.-C. Liu, D.-X. Cao, G.-L. Wang and F. Wei, ACS Nano, 2011, 5, 2787#8211;2794.
[16]R. B. Rakhi and H. N. Alshareef, J. Power Sources, 2011, 196, 8858#8211;8865.
[17]R. B. Rakhi, W. Chen, D. Cha and H. N. Alshareef, Adv. Energy Mater., 2012, 2, 381#8211;389.
[18]S. Chen, J. Duan, Y. Tang and S. Zhang Qiao, Chem.#8211;Eur. J., 2013, 19, 7118#8211;7124.
[19]S. Chen, J. Duan, M. Jaroniec and S. Z. Qiao, J. Mater. Chem. A, 2013, 1, 9409#8211;9413.
[20]Y. Zhu, S. Murali, M. D. Stoller, K. J. Ganesh, W. Cai, P.J. Ferreira, A. Pirkle, R. M. Wallace, K. A. Cychosz, M.Thommes, D. Su, E. A. Stach and R. S. Ruo#64256;, Science, 2011, 332, 1537#8211;1541.
[21]Z.-L. Wang, D. Xu, H.-G. Wang, Z. Wu and X.-B. Zhang, ACS Nano, 2013, 7, 24222430.N.
[22]G. Ning, C. Xu, L. Mu, G. Chen, G. Wang, J. Gao, Z. Fan,W.Qian and F. Wei, Chem. Commun., 2012, 48, 6815#8211;6817.
[23]陈彰旭,郑炳云,李先学模板法制备纳米材料研究进展化 工 进 展2010 年第 29 卷第 1 期 94-99.
[24]Bo Y,Yang H Y,Hu Y,Yao T M,Huang S S. Electrochim.Acta,2011,56 ( 6) : 2676#8212;2681
[25] 卢菊生 基于纳米材料/酶复合组装的药物代谢和免疫分析研究 东南大学博士学位论文
[26] Cao X D, Li Y, Zhang Z Q, et al. Catalytic activity and stability of glucose oxidase/horseradish peroxidase co-confined in macroporous silica foam [J]. Analyst, 2012, 137: 5785-5791.
[27] Cao X D, Yu J C, Zhang Z Q, et al. Bioactivity of horseradish peroxidase entrapped in silica nanospheres [J]. Biosens Bioelectron, 2012, 35: 101-107.
[28] Gambin Y, Simonnet C, Van Delinder V, et al. Ultrafast microfluidic mixer with three-dimensional flow focusing for studies of biochemical kinetics [J]. Lab Chip, 2010, 10: 598-609.
[29] Han Z, Li W, Huang Y, Zheng B. Measuring rapid enzymatic kinetics by electrochemical method in droplet-Based microfluidic devices with pneumatic valves [J]. Anal Chem, 2009, 81: 5840-5845.
[30] Hofmann H, Hillger F, Pfeil S H, et al. Single-molecule spectroscopy of protein folding in a chaperonin cage [J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2010, 107: 11793-11798.
[31] Yang Z, Xie Z, Liu H, et al. Streptavidin-functionalized three-dimensional ordered nanoporous silica film for highly efficient chemiluminescent immunosensing [J]. Adv Funct Mater, 2008, 18: 3991-3998.
[32] Rassaei L, Mathwig K, Kang S, et al. Integrated biodetection in a nano fluidic device [J]. ACS Nano, 2014, 8: 8278-8284.
[33] Chang F P, Hung Y, Chang J H, et al. Enzyme encapsulated hollow silica nanospheres for intracellular biocatalysis [J]. ACS Appl Mater Inter, 2014, 6: 6883-3890.
[34] Liu J, Lan G J, Peng J, et al. Enzyme confined in silica-based nanocages for biocatalysis in a Pickering emulsion [J]. Chem Commun, 2013, 49: 9558-9560.
[35] Ikemoto H, Chi Q, Ulstrup J. Stability and catalytic kinetics of horseradish peroxidase confined in nanoporous SBA-15 [J]. J Phys Chem C, 2010, 114: 16174-16180.
[36] Qian K, Wan J, Qiao L, et al. Macroporous materials as novel catalysts for effient and controllable proteolysis [J]. Anal Chem, 2009, 81: 5749-5756.
[37] Qian K, Wan J, Liu F, et al. A phospho-directed macroporous alumina-silica nanoreactor with multi-functions [J]. ACS Nano, 2009, 3: 3656-3662.
[38] Qian K, Wan J, Huang X, et al. A smart glycol-directed nanodevice from rationally designed macroporous materials [J]. Chem Eur J, 2010, 16: 822-828.
[39] Wan J, Qian K, Qiao L, et al. TiO2-modified macroporous silica foams for advanced enrichment of multi-phosphorylated peptides [J]. Chem Eur J, 2009, 15: 2504-2508.
[40] Dai Z H, Ni J, Huang X H, et al. Direct electrochemistry of glucose oxidase immobilized on a hexagonal mesoporous silica-MCM-41 matrix [J]. Bioelectrochemistry, 2007, 70: 250-256.
[41] Wu S, Ju H X, Liu Y. Conductive mesocellular silica-carbon nanocomposite foams for immobilization, direct electrochemistry, and biosensing of proteins [J]. Adv Funct Mater, 2007, 17: 585-592.
[42] Jia W Z, Wang K, Zhu Z J, et al. One-step immobilization of glucose oxidase in a silica matrix on a Pt electrode by an electrochemically induced sol-gel process [J]. Langmuir, 2007, 23: 11896-11900.
[43] Yang S, Jia W Z, Qian Q Y, et al. Simple approach for efficient encapsulation of enzyme in silica matrix with retained bioactivity [J]. Anal Chem, 2009, 23: 3478-3784.
[44] Piao Y, Lee D, Lee J, et al. Multiplexed immunoassay using the stabilized enzymes in mesoporous silica [J]. Biosens Bioelectron, 2009, 25: 906-912.
文 献 综 述
1.概述
纳米技术是指在纳米尺度范围内,操纵原子、分子或原子团、分子团,使它们重新排列组合, 创造具有特定功能的新物质,或对某物质进行研究,掌握其原子和分子的运动规律和特性的崭新高技术学科,它的发展开辟了人类认识世界的新层次[1]。纳米科技和生命科学是21世纪最前沿的两大学科,纳米技术的介入为生命科学的研究提供了无穷的想象空间。人体内所发生的生命活动或生物反应都需要酶的参与,以提高效率[2]。而体内的酶大多不是自由状态存在,它们或是溶解于细胞质中,或是与各种膜结构结合在一起,或是位于细胞内其他结构的特定位置上,发挥其独特的生物催化性能。因此,以纳米材料为载体组装酶,体外模拟生命活动,研究酶生物催化行为,构建以酶为基础的纳米生物反应器和生物传感器已引起人们越来越大的兴趣[3-5]。
2.纳米材料及其发展
纳米材料是指三维空间尺寸至少有一维处于纳米级(通常为1-100 nm)的材料。由于纳米材料处在微观世界和宏观物体的临界区,属于典型的介观系统。因此它显示出许多不同于常规材料的特殊性能,如纳米材料具有的表面效应、宏观量子隧道效应、量子尺寸效应、小尺寸效应和介电限域效应[6,7]。
石墨烯是一个原子厚度的二维碳纳米材料,由于其高的比表面积,显著的导热性和优良的光电性能,受到了越来越多的研究者的关注,这些独特的性质是的石墨烯在电子器件,传感器和能量储存等领域得到了广泛的运用[8]。