白色链霉菌以糖蜜为廉价碳源合成ε-聚赖氨酸的初步研究文献综述
2020-04-13 17:03:39
ε-聚赖氨酸(ε-poly-L-lysine,以下简称ε-PL)是日本的酒井平一和岛昭二[1]两位博士1977年在大量筛选有价值的生物碱(Dragendorff-positive)物质时首次发现的一种新型聚合物。ε-PL具有广谱抑菌性,能够抑制革兰氏阳性菌、革兰氏阴性菌、真菌和病毒的活性,且具有安全性能高、水溶性好、热稳定性好等优点,是一种性能优良的生物防腐剂。此外,ε-PL在化妆品、基因载体、药物包被物、电子材料和环保材料等领域也具有广阔的开发和应用前景。目前世界上仅有日本实现了ε-PL工业化[2],ε-PL市场价格居高不下,限制它的广泛应用。总之,ε-PL作为一种具有巨大的应用潜力与商业价值的生物高分子,已成为众多学者的研究热点。
1.1 聚赖氨酸的理化性质
ε-PL是一种由微生物大量生产的氨基酸同型聚合物,其结构如下图所示,它由人体必需氨基酸L-赖氨酸的ε-氨基与另一L-赖氨酸的α-羧基形成的ε-酰胺键连接而成[3]。ε-PL纯品为淡黄色或白色粉末、吸湿性强,略有苦味;极易溶于水、盐酸,不溶于乙醇、乙醚等有机溶剂,有良好的热稳定性,在100 ordm;C加热处理30 min及120 ℃加热处理20 min,均保持其抑菌能力。ε-PL的等电点pI约为9.0,比旋光度[α]25D为 57.1amp;#0;(c=1,H2O),[α]25D 为 39.9amp;#0;(c=1,5mol L-1 HCl),熔点Mp为25 ordm;C [4]。
图1ε-聚赖氨酸结构式
1.2 聚赖氨酸的生理功能和临床应用
ε-PL具有水溶性、聚阳离子、无毒可食用、可生物降解等许多独特的理化和生物学特性,这些特性使其具有抗菌抗病毒、安全、耐高温等优点。因此,在注重安全、环保的今天,ε-PL及其衍生物在食品、医药、农业、电子等诸多领域将具有十分广阔的应用前景。
ε-PL及其衍生物的应用
应用领域 |
应用 |
应用实例 |
食品工业 |
天然安全食品防腐剂 |
方便米饭、湿熟面条、熟菜、海产品、酱类、酱油、鱼片和饼干等多种食品的保鲜防腐 |
乳化抗菌剂 |
与葡聚糖共价结合作为具有乳化和抗菌的双功能添加剂 | |
食疗剂 |
通过抑制小肠内胰脂肪酶的活性来减少小肠对脂肪的吸收,进而抑制肥胖症的发生 | |
生物医药 |
药物靶向载体 |
与双链 RNA 多聚肌甘酸-聚胞甘酸(poly I.poly C)共价化合作为内源性干扰素诱导物 |
氨甲嘌呤(治疗白血病、肿瘤药物)与ε-PL聚合,用来治疗白血病、肉瘤及其他形式的肿瘤疾病 | ||
非病毒基因载体 | ||
药物缓释材料 |
ε-PL与海藻酸盐复合体做成缓释胶囊的包被膜 | |
其他 |
吸水树脂 |
通过γ-射线照射制备的ε-PL吸水树脂 |
电融合促融剂 |
微生物育种 | |
基因芯片 |
核酸生物芯片、氨基酸芯片、蛋白质芯片 |
1.3 聚赖氨酸生产菌株
高效生产菌株的选育是ε-PL研究的热点之一。日前工业上一般采用S. albulus作为ε-PL的发酵生产菌株,它是1981年由Shima S和Sakai H[4]筛选得到并进行分类鉴定的。
在很长一段时间内,筛选ε-PL的产生菌都是一项繁琐的工作。直到2002年,日本学者Masanobu[5]找到了一种颇为有效的ε-PL菌株筛选方法,通过在培养基中加入一种酸性染料PolyR-478,可以在ε-PL产生菌的菌落周围看到明显的颜色变化,克服了ε-PL生产菌株筛选的盲目性,可以进行大规模的筛选。Masanobu采用这种方法,对各地土壤样品进行了大规模的筛选,获得了多株ε-PL产生菌株,并且发现这些菌株大部分属于链霉菌。在链霉菌中,除了白色链霉菌外,北里孢菌、诺氏链霉菌和弗吉尼亚链霉菌也具有产ε-PL能力。Epichloe sp.MN-9是日前发现的唯一一株产ε-PL的真核微生物菌株。
1.4 ε-PL发酵生产工艺概况
ε-PL发酵生产的影响因素很多,包括菌株、培养基、培养条件等,均与ε-PL的生产密切相关。
自然界筛选得到的ε-PL生产菌株其产量普遍很低(摇瓶产量低于2 g L-1),所以具有实际生产价值并能够用于工业生产的菌株均经过诱变选育得到。1988年チッソ株式会社的平木纯和森田裕以S. albulus 346菌株为出发菌株,经过N-甲基-N-硝基-N#8217;-硝基胍(N-methyl-N-nitro-N#8217;-nitrosoguanidine,NTG)作用后,以L-赖氨酸的结构类似物S-AEC为筛选标记,筛选得到编号为11011A-1号的突变菌株,其摇瓶发酵产量比出发菌株提高3.3倍;此外还以100 mg L-1的氯霉素作用于S. albulus 346菌株并培养8 h,筛选得到质粒扩大菌株编号为50833菌株,其摇瓶发酵产量比出发菌株提高9倍[6]。1997年チッソ株式会社的岩田敏治和平木纯等[7]以S. albulus 11011A-1为出发菌株,经过NTG、紫外线照射、5-溴尿嘧啶等试剂处理后,以10 mg mL-1的S-AEC作为抗性标记,筛选得到编号为B21021的S-AEC高浓度抗性菌株。2001年Kahar等[8]以S-AEC和Gly为抗性标记,以S. albulus 346菌株为出发菌株,筛选得到具有AECr和Glyr的菌株编号为S. albulus 410,其摇瓶产量提高6倍。
ε-PL生产工艺优化对于ε-PL的影响也很大。由于ε-PL产生菌株的摇瓶批式发酵产量低下,均在0.2~10 g L-1。为此,平木纯等人采用发酵罐批式发酵,并采用调控pH等条件来提高ε-PL产率。1997年,チッソ株式会社的岩田敏治和平木纯等[7]以B21021菌株为研究对象,3 L发酵罐中采用10%氨水调控体系pH4.0,补加葡萄糖和硫酸铵,发酵培养72 h时ε-PL产率为16.2 g L-1,而发酵培养168 h时ε-PL产率为31 g L-1,产率有了较大幅度的提高。2001年Kahar 等人研究了S. albulus 410菌株在5 L发酵罐中调控发酵,结果发现在搅拌转速为350 r min-1,通气量为1 vvm下,采用氨水调控体系pH值,在发酵前期调控体系pH5.0,以促进菌体增长;在发酵中后期调控体系pH4.0,补加葡萄糖和硫酸铵,在补加葡萄糖时,葡萄糖浓度控制在10 g L-1左右,发酵培养8天后,ε-PL产率高达48.3 g L-1,较没有采取调控时,产率提高10倍之多[8]。此外,由于白色链霉菌在发酵过程中形成菌丝球,搅拌转速的提高,产生巨大的剪切力,容易将菌丝球剪切成丝状,增加了细胞内核苷酸等相关物质渗入到发酵液中,不利于产物的提取,并且提高搅拌转速,需要消耗大量的动力,增加了工业化成本。2002年Kahar等[9]采用气升式发酵罐生产ε-PL,在动力消耗为0.3 kw m-3下,ε-PL产率可达30 g L-1,而在搅拌罐中生产相同产量的ε-PL则需要消耗8 kw m-3,由此表明,采用气升式发酵罐生产ε-PL可以更有效地降低生产成本。
1.5 ε-PL的应用实践
目前,ε-PL主要作为食品防腐剂而应用在食品工业中。ε-PL已于2003年10月被FDA批准为安全食品保鲜剂(FDA批准号:GRN 000135)。此外,ε-PL在保健食品,医药领域,高吸水性树脂制备及生物领域中均有着广泛的应用前景。
1.5.1.ε-PL在食品防腐领域中的应用
食品的腐败变质主要是指由于微生物的作用而导致食品质量下降或失去食用价值的一切变化。全世界每年约有10~20%的农副产品、水产品、果蔬因为腐败变质而无法食用,经济损失巨大,而且腐败变质食品对人类的健康卫生造成巨大威胁[10]。开发抗菌性强、安全无毒的天然防腐剂已成为各国食品科技工作者的研究重点。其中,ε-PL作为新型的食品保鲜防腐剂具有抑菌谱广、水溶性好、安全性高、热稳定性好、抑菌pH范围广等优点,具有巨大的商业潜力,受到人们广泛的关注。
1.5.2.ε-PL作为食疗剂在保健食品中的应用
ε-PL在食疗方面的应用具有广泛的应用前景。肥胖是一种严重的疾病,它会导致许多健康问题如糖尿病、高血压、动脉硬化等。预防肥胖的首要手段就是低脂肪饮食;另一种可行的手段是摄取天然产物以限制肠内脂肪。众所周知,胰脂肪酶在脂类吸收中起到至关重要的作用,因此使用天然产物降低胰脂肪酶的作用可减少肠内脂肪吸收。最近,Kito等[11]首次报道了ε-PL抑制脂肪酶活力特征及ε-PL对饭后甘油三脂的抑制作用,指出ε-PL能够浓度在10~1000 mg L-1时作用于含有胆盐和磷酸胆碱的乳剂并使其分解,从而抑制脂肪酶活性。
1.5.3.ε-PL在医药领域中的应用
ε-PL在医药方面主要应用于药物的缓释和靶向载体。由于ε-PL富含阳离子,与带有阴离子的物质有很强的静电作用力并很容易通过生物膜,这样可以降低药物的阻力并提高药物的转运效率。可将ε-PL用作某些药物的载体,这在医疗和制药方面得到广泛的应用[12-14]。Szende等人[15]发现ε-PL能够抗人体血红白血病细胞(K-5620)和老鼠淋巴白血病肿瘤细胞(L1210)Gugerli等人[16]将Mw为2500~20500 Da的蛋白质包埋于PL-海藻酸盐的膜内,成功的实现了蛋白质在膜中的缓释。Fan-Tsl等将PL作为媒介应用与酶联免疫检测(ELISA)。Fan用PL包裹T2毒素,然后接种白兔T2抗体,通过专一性的抗原抗体反应来检测抗体的数量[17-19]。此外,由于ε-PL是阳离子型高聚合物,并且有很强的抗菌性和抗病毒能力,因此有望开发成抗菌纤维。
1.5.4.ε-PL在吸水树脂中的应用
ε-PL通过简单的辐射交联可得到高吸水性树脂。日本物质工学工业技术研究所的Choi等[20]用γ-射线使ε-PL交联得到吸水倍数约200倍的高吸水性树脂SAP,另外Kunioka等[21]把ε-PL和γ- PGA用γ-射线交联得到吸水倍数约为150倍的树脂。ε-PL交联得到的吸水性树脂的吸水性比聚丙烯酸和聚谷氨酸交联得到的树脂低,但有研究表明ε-PL树脂在盐溶液中的吸水倍数比市售的聚丙烯酸和γ-PGA的树脂高许多。将ε-PL吸水性树脂与土壤结合,不仅可以改进团粒,还能改进土壤的保墒、保湿、保肥性能,在改造荒山、秃岭、沙漠方面发挥积极作用。
2.虽然借助发酵工程、基因工程等手段和策略,ε-PL的产量得到了很大提高,但是生产成本过高仍是制约ε-PL产业化的最大问题之一,降低原料成本是实现ε-PL大规模生产的重要保证。在以往的研究中,大多数的生产菌株都使用葡萄糖为碳源应用于ε-PL的发酵生产,由于使用量较大,在原料成本中占据了很大的比例,因此急需开发出一种廉价的,可再生的碳源。糖蜜是制糖工业的副产物,含有约50%(w/w)的总糖(蔗糖,葡萄糖,果糖),以及悬浮胶体,重金属,维生素,含氮化合物等且成本较低,是理想的低成本碳源。Kalogiannis[22], Moosavi[23]等分别报道了利用糖蜜为原料生产黄原胶的研究。此外,糖蜜也被广泛应用于普鲁多糖[24]、结冷胶[25]等高分子聚合物产品的发酵生产中,但至今仍未有将糖蜜应用于ε-PL生产报道。本实验室使用的甘蔗糖蜜中主要的糖分为38.5%(w/w)蔗糖,8%葡萄糖,14.5%(w/w)果糖,本论文将开展糖蜜作为廉价碳源生产ε-PL的研究。
参考文献
1 Shima S,Sakai H.Polylysine produced by Streptomyces.Agric.Biol.Chem.,1977,41:1807~1809
2 Hiraki J.ε-polylysine, its development and utilization.Fine Chem.,2000,29:18~25.
3 Jun H,Takafumi I,Shin-ichi N,et al.Use of ADME studies to confirm the safety of ε-polylysine as a preservative in food.Regul.Toxicol.Pharm.,2003,37:328~340.
4 Shima S,Sakai H.Poly-L-lysine produced by Streptomyces.Part Ⅲ.Chemical studies.Agric.Biol.Chem.,1981,45(11):2503~2508.
5 Nishikawa M,Ogawa K.Distribution of microbes producing antimicrobial ε-poly-L-Lysine polymers in soil microflora determined by a novel method.Appl.Environ.Microbio.,2002,68 (7):3575~3581.
6 Hiraki J,Morita H.Strain mass-producing epsilon-poly-L-lysine,a method for using its strain and a method for producing epsilon-poly-L-lysine.European Patent.EP0256423A2.1988.2.24.
7 岩田敏治,岩泽由美子,白石慎治等.ε-ポリ-L-リジンを著量に生产すゐ菌株及ぴそれを用ぃたε-ポリ-L-リジンの制造法.日本.JP409173057A.1997.7.8.
8 Kahar P,Iwata T,Hiraki J,et al. Enhancement of ε-polylysine production by Streptomyces albulus strain 410 using pH control.J.Biosci.Bioeng.,2001,91(2):190~194.
9 Kahar P,Kobayashi K,Iwata T,et al.Production of ε-polylysine in an airlift bioreactor (ABR) .J.Biosci.Bioeng.,2002,93(3):274~280.
10 张方,徐学万.几种天然防腐剂及其在食品工业中的应用.食品工业,2001,3:30~32.
11 Kito Y,Hiramot S,Murao M,et al.ε-poly-L-lysine inhibits pancreatic lipaseactivity and suppresses hypertriacylglyceridemia in rats.J.Nutr.,2003,133:1887~1891.
12 Ckenzie.Comparative gene transfer efficiency of low molecular weight polylysine DNA-condensing peptides.J.Pept.Res.,1999,54(4):311~318.
13 Hao Z J.In vitro reation of penicilloyl and penicillanyl albumin and polylysine conjugates with IgE-antibody.J.Immunol.Methods,2000,242(1-2):43~51.
14 Nussinovitch A,Gershon Z,Nussinovitch M.Liquid-core hydrocolloid capsules.Food Hydrocolloids,1996,10(1):21~26.
15 Szende B.Antitumor effect of lysine-isopeptides.Cancer Cell Inter.,2002,(2):12~16.
16 Gugerli R,Cantana E,Heinzen C,et al.Quantitative study of the production and properties of alginate/poly-L-lysine microcapsules.J.Microencapsulation, 2002,19(5):571~590.
17 Sakata M,Todokoro M,Hirayama C.Removal of endotoxin from protein solution using poly(ε-lysine)-immobilized cellulose beads.Am.Biotechnol.Lab.,2002,20(1):36~38.
18 Hirayama C,Masayo S,Mariko N,et al.Preparation of poly(ε-lysine) absorbents and application to selective removal of lipopolysaccharides..J.Chromatogr.B,1999,721:187~195.
19 Fan T S L,Zhang G S,Chu F S.An indirect enzyme-linked immunosorbent assay for T-2 toxin in biological fluids.J.Food Prot.,1984,47(12):964~967.
20 Choi H Y,Yang R,Kunioka M.Synthesis and characterization of pH-sensitive and biodegradable hydrogel prepared by γ-irradiation using microbial poly(γ-glutamic acid) and poly(ε- lysine).J.Appl.Polym Sci.,1995,58:807~814.
21 Kunioka M,Choi H J.Properties of biodegradable hydrogels prepared by γ-irradiation of microbial poly(ε-Lysine) aqueous solutions.J.Appl.Polym Sci.,1995,58:801~806.
22 Kalogiannis, S., Iakovidou, G., Liakopoulou-Kyriakides, M., Kyriakidis, D.A., Skaracis,G.N., 2003. Optimization of xanthan gum production by Xanthomonas campestrisgrown in molasses. Process Biochem. 39, 249#8211;256
23 Moosavi, A., Karbassi, A., 2010. Bioconversion of sugar-beet molasses into xanthan gum. J. Food Process. Pres. 34, 316#8211;322
24 Lazaridou, A., Biliaderis, C.G., Roukas, T., Izydorczyk, M., 2002a. Production and characterization of pullulan from beet molasses using a nonpigmented strain of Aureobasidium pullulansin batch culture. Appl. Biochem. Biotechnol. 97, 1#8211;22.
25 Banik, R., Santhiagu, A., Upadhyay, S., 2007. Optimization of nutrients for gellan gum production bySphingomonas paucimobilisATCC-31461 in molasses based medium using response surface methodology. Bioresour. Technol. 98, 792#8211;797
ε-聚赖氨酸(ε-poly-L-lysine,以下简称ε-PL)是日本的酒井平一和岛昭二[1]两位博士1977年在大量筛选有价值的生物碱(Dragendorff-positive)物质时首次发现的一种新型聚合物。ε-PL具有广谱抑菌性,能够抑制革兰氏阳性菌、革兰氏阴性菌、真菌和病毒的活性,且具有安全性能高、水溶性好、热稳定性好等优点,是一种性能优良的生物防腐剂。此外,ε-PL在化妆品、基因载体、药物包被物、电子材料和环保材料等领域也具有广阔的开发和应用前景。目前世界上仅有日本实现了ε-PL工业化[2],ε-PL市场价格居高不下,限制它的广泛应用。总之,ε-PL作为一种具有巨大的应用潜力与商业价值的生物高分子,已成为众多学者的研究热点。
1.1 聚赖氨酸的理化性质
ε-PL是一种由微生物大量生产的氨基酸同型聚合物,其结构如下图所示,它由人体必需氨基酸L-赖氨酸的ε-氨基与另一L-赖氨酸的α-羧基形成的ε-酰胺键连接而成[3]。ε-PL纯品为淡黄色或白色粉末、吸湿性强,略有苦味;极易溶于水、盐酸,不溶于乙醇、乙醚等有机溶剂,有良好的热稳定性,在100 ordm;C加热处理30 min及120 ℃加热处理20 min,均保持其抑菌能力。ε-PL的等电点pI约为9.0,比旋光度[α]25D为 57.1amp;#0;(c=1,H2O),[α]25D 为 39.9amp;#0;(c=1,5mol L-1 HCl),熔点Mp为25 ordm;C [4]。
图1ε-聚赖氨酸结构式
1.2 聚赖氨酸的生理功能和临床应用
ε-PL具有水溶性、聚阳离子、无毒可食用、可生物降解等许多独特的理化和生物学特性,这些特性使其具有抗菌抗病毒、安全、耐高温等优点。因此,在注重安全、环保的今天,ε-PL及其衍生物在食品、医药、农业、电子等诸多领域将具有十分广阔的应用前景。
ε-PL及其衍生物的应用