小麦酯酶的化学修饰文献综述
2020-03-10 17:00:08
文 献 综 述 1.当今社会现状 随着蔬菜中农药残留引起的食品安全问题的频发,农药残留的检测受到人们的普遍重视。而我国的农药年生产量居世界第三,但农药品种内部结构不合理,杀虫剂占农药总产量的70%。在70%的杀虫剂中,有机磷杀虫剂占70 %,其中高毒性的有机磷和氨基甲酸酯类杀虫剂又占有机磷和氨基甲酸酯类杀虫剂的70%左右,因此最容易引起食物农药残留中毒[1]。 目前主要的检测方法有光谱法[2]、色谱法[3]和快速检测法即酶抑制法[4],其中酶抑制法主要采用动物胆碱酯酶和植物酯酶。植物酯酶抑制法由于其酶源易得,提取和保存方便,检测成本低,测量准确度较好,可以满足有机磷农药残留检测市场化要求等优点,成为近年来有机磷农药残留快速筛选的研究重点 。基于酶抑制原理的快速检测技术[6]势将成为食品生产或产品销售时农药残留检测及控制的重点研究对象。 2.几种前人常用的方法 王仲海等[7]采用分光光度法对植物酯酶和动物酯酶在不同pH值下的酶活性、抑制程度等性质进行了实验研究,张宁[8]以及黄志勇等[9]比较了测定蔬菜中有机磷农药残留的胆碱酯酶抑制法和植物酯酶抑制法,通过正交试验优化了两种酶抑制法的测定条件,还有有机磷水解酶检测水解产物来测定有机磷农药的含量[10]。得出结论,植物酯酶具有酶源丰富、取材方便、成本低和保存方便的优势,而且农药的灵敏度和检出限与动物胆碱酯酶相当[11],精密度甚至更好。 双水相萃取法[12]和硫酸铵沉淀法[13]是目前使用的较方便的俩种粗酶提取法,硫酸铵沉淀法较容易理解,所以我采用硫酸铵沉淀法来纯化小麦酯酶。 酶的化学修饰主要有俩种:一是改变酶分子的主链结构[14],这种修饰属于分子生物学层次,又称理性分子设计,目前主要通过定点突变和酶法进行; 二是改变酶分子的侧链基团。目前的化学修饰研究基本上都是针对酶侧链的修饰,主要包括酶分子表面的非选择性修饰和分子内部特异位点的选择性修饰。酶的表面的非选择性修饰主要包括小分子修饰,大分子修饰(聚乙二醇修饰,多糖修饰);分子内部特意位点的选择性修饰包括基因重组,定点突变。 3.我在试验中采取的几种化学修饰方法 在已有的酶修饰研究中,最常见也是最主要的化学修饰是大分子修饰,其主要利用大分子高分子量而且具有良好的生物相容性和水溶性,对一定基团或者化学键改变达到修饰的目的。 (1)肝素是聚阴离子水溶性酸性粘多胺聚糖类药物,以高分子蛋白聚糖的形式存在于动物体内,具有抗炎、抗粘附作用。从生物活性研究上看脱硫酸化肝素能不同程度地降低血小板与血浆蛋白和血纤蛋白原的黏附[15]。杨华利[16]用肝素与大蒜的SOD酶共价修饰,获得了高稳定性的SOD酶。 (2)右旋糖酐是一种天然的高分子多糖,具有良好的生物相容性和水溶性,是目前应用广泛的酶分子修饰剂之一,它由葡萄糖通过糖苷键连接而成,其多糖上的双羟基经活化后可与酶分子上的游离氨基共价结合,从而达到酶改性的目的。朱怡然17}利用右旋糖酐多糖上的双羟基经活化后可与酶分子上的游离氨基共价结合,从而达到酶改性的目的对savinase蛋白酶进行修饰{。修饰后的酶热稳定性提高,与底物的亲和力增强,且耐碱性有所提高。 (3)琥珀酸酐可以与赖氨酸残基的ε-氨基发生特异性修饰反应从而改变赖氨酸的结构{18]。李树白[19]利用酸酐对木瓜蛋白酶的进行修饰,获得修饰的木瓜蛋白酶热稳定性,耐碱性和耐洗涤性均有提高。 (4)聚乙二醇(PEG)是一种线性、无毒且不带电的水溶性大分子,分子末端有两个能被活化的羟基,活化的PEG修饰剂主要和酶蛋白分子表面的残留氨基相偶联。刘恩岐{20]利用活化的聚乙二醇与生姜蛋白酶表面残基相偶联的修饰。修饰后的生姜蛋白酶较原酶,热稳定性提高,但活性却降低了。右旋糖酐修饰的效果要好于聚乙二醇,因为其能提高蛋白酶的活性。 (5)金属离子在一定浓度对酶活性有影响,可以与酶的活性中心金属离子进行置换,常用的金属离子化学修饰剂有Mg 2 ,Ca2 和Fe 2 ,由于这三种离子往往是酶活性中心的激活剂,往往可以提供酶活。Chang-jun Hou等{21]的研究表明Ca2 和Mg 2 是植物酯酶的活性激活剂。 4.一般原理及未来 采用植物酶测定农药残留量的工作原理是依据农药能抑制植物酶的活性,能产生这种反应的农药包括有机磷农药和某些氨基甲酸酯农药。利用这一原理可以将小麦酯酶置于薄层色谱版、纸片或者试管中 ,使酶与式样进行反应,如果式样中没有农药残留或残留量极小,酶的活性不被抑制,基质可以水解,水解产物通过显色剂或本身具有颜色而显色;反之,如果农药残留量较高,酶的活性就会被农药所抑制,水解产物减少或没有产物生成,酶被抑制的程度又可用比色法来测定。然而由于小麦酯酶是小麦中分离乙酸萘酯等酯类的关键酶类,一旦被分离,酶分子结构的微环境往往会发生改变,从而影响酶活性部位氨基酸残基的电离状态,稳定性差而且活化作用受到影响。研究表明,酶的化学修饰在分子水平上对酶进行改造,即利用化学手段将大分子或者某些基团结合到酶分子上,改变酶的理化性质,这样可以快速,廉价的提高酶活性[22]。所以,我们可以根据常见的修饰试剂选择合适的试剂对小麦酯酶进行修饰,观测其结果是否达到可以提高小麦酯酶的稳定性和增进其催化活性,来找到几种方便快捷且廉价的化学修饰剂本文以小麦面粉为植物酯酶的提取原料,经过硫酸铵沉淀过滤得到粗酶液,通过对小麦酯酶加以化学修饰来提高酶活和酶的稳定性。 参考文献: [1] 汪雅谷,张四荣.无污染蔬菜生产的理论与实践[M].北京:中国农业出版,2001. [2] 朱春艳,李伟凯,李艳梅.FTIR/ATR 技术快速检测蔬菜中有机磷农药残留[J]. 八一农垦大学学报,2007,19(6):78-82. [3] 赵杰.气象色谱法测定两市中14种有机磷残留量[N].分析测试技术与仪器, 2012 02期 [4] Li Jianke , Zhou Yanli , Wen Yanxia , et al . Studies on the Purification and Characteriza- tion of Soybean Esterase, and Its Sensitivity to Organophosphate and Carbamate Pesticides [J]. Agricultural Sciences in China . 2009,8(4) : 455~463. [5] 王元,周帅,房文红.凡纳滨对虾乙酰胆碱酯酶组织分布及对有机磷农药敏感性分析.上海海洋大学学报 ,2012,21(1). [6] Gogol E V , Evtugyn G A , Marty J L , et al . Ampeno metric biosensors based on coated screen-printed electrodes for the determination of Cholinesterase inhibitors[J] . Talanta . 2000 , 53 (2) : 379~389. [7] 王仲海,徐斐.农药生物传感器所用酶的比较研究[J].食品科学, 2003,24(1):21-23. [8] 张宁.两种酶快速检测有机磷农药残留条件优化研究[J].江苏农业科学,2006,(1):125-137. [9] 黄志勇,袁园,吕禹泽.蔬菜中有机磷农药残留的两种酶抑制快速检测方法的比较研究[J].食品科学,2003,24(8):135-137. [10] Mulehnadanip,Mulehandnaia,Kaneval , et al . Biosensor for direct determination of organophosphate nerve agents:Potentionmetric enzyme electrode[J]. Biosensor Bioelectronics . 1999,(14) : 77~85 [11] 李治祥,翟延路.应用植物酯酶抑制技术测定蔬菜水果中农药残留量[J]. 环境科学学报,1987,(12):472~478. [12] Limin Yanga, Danqun Huoa, Changjun Houa.Purification of plant-esterase in PEG1000/NaH2PO4 aqueous two-phase system by a two-step extraction[J].Process Biochemistry. 2010,45:1664#8211;1671. [13] 张煜,王建英,王晶妍.硫酸铵盐分级分离大豆酸沉蛋白[N].河南师范大学学报(自然科学报),201106期 [14] Davis B.Chemical modification of biocatalysts[J] .Current Option in Biotechnology.2003,14: 379-386. [15] 范学强,迟延青,姬胜利.肝素的化学修饰及其修饰产物活性的研究进展.中国生化药物杂志,2004,25(1):41~44. [16] 杨华,周小苗,方正东.大蒜SOD酶的分离纯化和甘肃修饰.湖南农业科学,2011,(13):115~117. [17] 朱怡然,王强,陈忍忍.右旋糖酐对savinase蛋白酶的化学修饰及酶学性质研究.中国生物工程杂志,2011,31(10):45~49. [19] Christian E,Sibylla G,Sebastian B,et al.Effect of chemical modification of lysine residues in trypsin[J].Journal of Molecular Catalysis B:Enzymatic.2000,8:193-200. [18] 李树白,张海涛,聂华丽.木瓜蛋白酶的化学修饰及对其酶活力的影响.化学学报,2009,69(30):2390~2394. [20] 刘恩岐,张建萍,贺菊萍.生姜蛋白酶的大分子修饰.食品科学,2010,31(31):320~323. [21] Chang-jun Hou ,Kun He ,Li-min Yang.Catalytic characteristics of plant-esterase from wheat flour[J]. World J Microbiol Biotechnol. 2012,28:541#8211;548. [22] 黎春怡,黄卓烈.化学修饰法在酶分子改造中的应用.生物技术通报,2011,(9): 40~42. |